在人體內,線粒體是我們身體的“能量中心”,它們可以將營養(yǎng)物質轉化為ATP等可用能源。除了在人體內外動植物細胞中都能發(fā)現(xiàn)線粒體存在。通過從微生物和細胞中分離出線粒體,我們可以更好地了解其內在機制和功能。在本文中,我們將介紹從微生物和細胞中分離線粒體的基本步驟方法。
什么是線粒體
自20世紀初被發(fā)現(xiàn)以來,線粒體一直被認為是細胞內部的主要能量儲備所在。線粒體是由兩個膜界限組成的可變形的類囊體結構,在其內側膜中包含酶群,參與三磷酸腺苷(ATP)的形成。線粒體可進一步劃分為許多結構不同的亞種,這些亞種通過形態(tài)和功能上的區(qū)別進行分類。盡管對線粒體的研究日趨深入,但分離線粒體的技術仍然是研究員工常常需要掌握和精通的技術。
從微生物中分離線粒體的基本步驟方法
在微生物中,將細胞產物進行相對簡單地分離是較為容易的。關鍵的問題在于如何有效地純化線粒體并且增加其穩(wěn)定性以進行更加深入的研究。
一、所需材料
l 酵母培養(yǎng)
l 冷凍離心機
l 15 毫升離心管
l 氯化鈉 (0.9%)
l 微量移液器
l 冰冷裂解緩沖液
l 搖床
l 線粒體儲存緩沖液
l 冰箱
l 15 ml 微量離心管
二、從微生物(酵母細胞)中分離線粒體的步驟方法:
1. 將過夜酵母培養(yǎng)物無菌轉移到兩個 15ml 離心管中。
2. 在 4°C 下以 500g 離心 10 分鐘。
3. 小心去除上清液,不要干擾沉淀。
4. 使用微量移液器在 1ml 氯化鈉 (0.9%) 中小心沖洗沉淀。
5. 使用微量移液器丟棄離心管中的氯化鈉。
6. 將沉淀重懸于 1ml 冰冷的裂解緩沖液中,并使用微量移液器充分混合。
7. 在 4°C 的搖床上孵育 10 分鐘。
8. 在 4°C 下以 1000g 離心 10 分鐘,小心去除上清液。
9. 將細胞沉淀重懸于 1.5 ml 冰冷的破碎緩沖液中,并使用針頭的鈍端完成細胞破碎。
10. 將裂解物在 4°C 下以 1000g 離心 10 分鐘。
11. 將上清液轉移到新鮮的 15mL 管中,并混合從步驟 7 中獲得的上清液。
12. 在 4°C 下以 6000g 離心 10 分鐘并棄去上清液。
13. 用線粒體儲存緩沖液清洗顆粒。
14. 在 4°C 下以 6000g 離心 20 分鐘。
15. 將沉淀重懸在線粒體儲存緩沖液中并儲存在 -20°C。
三、從細胞培養(yǎng)物中分離線粒體
1.所需的生物試劑/實驗試劑
l 1 升冷 STE,具有以下成分:
l 250 毫米蔗糖 = 85.58 克/升
l 5 毫米 Tris = 0.606 克/升
l 2 毫米 EGTA = 0.76 克/升
l 使用 4?C milliQ實驗室純水,pH 值至 7.4,使用 2 M HCl,置于冰上
2. 從細胞培養(yǎng)物中分離線粒體的具體方法
1. 在 3 x 500 cm2 組織培養(yǎng)板中使細胞生長至 85-95% 匯合度
2. 在生長時,吸出所有培養(yǎng)基。
3. 用 30 ml 冷 STE 清洗細胞單層,吸掉所有 STE
4. 用 30 ml 冷 STE 清洗第二次并吸出
5. 使用干凈的刀片從板表面刮下細胞單層
6. 將刮下的細胞重懸于 5 ml 冷 STE 中并轉移至離心管 (50 ml) 中。重復兩次。
7. 對所有組織培養(yǎng)板重復步驟 2-6,將細胞匯集到離心管中(每 1 個托盤 1 個管)。
8. 在 4?C 2000 rpm 下旋轉細胞 10 分鐘。
9. 小心吸出上清液(沉淀略微擴散)并保留細胞沉淀。
10. 在含有蛋白酶抑制劑和 0.5% 無脂肪酸 BSA 的 3.5 ml 冷 STE 中重懸細胞沉淀,轉移到冷的 7ml 玻璃-聚四氟乙烯勻漿器中。用 1.5 ml 含 0.5% 無脂肪酸 BSA 的 STE 洗滌試管,然后轉移至勻漿器。
11. 通過“緊密”柱塞緩慢通過 10 次使細胞勻漿,并將勻漿轉移到 50 ml 離心管中。如果需要,加滿冰冷的 STE。
12. 將勻漿在 4?C 下以 3000 rpm 的轉速旋轉 3 分鐘(1 管)
13. 通過雙層濕棉布過濾上清液,并在 4?C 下以 10000 rpm 的轉速旋轉 11 分鐘(2 管)
14. 倒出上清液并擦拭管內壁。
15. 在冰冷的 STE 中重懸線粒體沉淀,并轉移到 15ml 離心管中。加入冰冷的 STE 并以 11,600 G 旋轉 10 分鐘。
16. 使用冷試管作為杵將線粒體顆粒重新懸浮在殘留的上清液中。
17. 將線粒體放在冰上。
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