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  • DNA純化試劑盒

天根DNA純化試劑盒-DP205

  天根DNA純化試劑盒-DP205試劑盒采用的離心吸附柱純化酶切、PCR等反應(yīng)溶液中的DNA片段,同時除去蛋 白質(zhì)、其它有機(jī)化合物、無機(jī)鹽離子及寡核苷酸引物等雜質(zhì),回收100 bp-10 kb DNA片段, 回收率可達(dá)80%以上。本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、測序、文庫篩選、 連接和轉(zhuǎn)化等實(shí)驗(yàn)。
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天根DNA純化試劑盒-DP205產(chǎn)品簡介

DP205-02

  天根DNA純化試劑盒-DP205試劑盒采用獨(dú)特的離心吸附柱純化酶切、PCR等反應(yīng)溶液中的DNA片段,同時除去蛋 白質(zhì)、其它有機(jī)化合物、無機(jī)鹽離子及寡核苷酸引物等雜質(zhì),回收100 bp-10 kb DNA片段, 回收率可達(dá)80%以上。每個離心吸附柱每次可吸附的DNA量為20 μg。 使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、測序、文庫篩選、 連接和轉(zhuǎn)化等實(shí)驗(yàn)。

 產(chǎn)品特點(diǎn) 快速:整個操作過程只需十幾分鐘,節(jié)省時間。

 多樣:可以回收單鏈、雙鏈DNA片段以及環(huán)狀質(zhì)粒DNA。

 高效:離心柱和緩沖液可大量回收到高純度目的DNA。

1.本試劑盒適用于無選擇性的回收溶液中所有DNA片段(可去除50 bp以下的小片段),如 需選擇性回收特定片段,同時去除其他不同大小片段,請選擇膠回收試劑盒。

2.洗脫緩沖液加量應(yīng)根據(jù)回收前DNA量來決定:如回收前DNA只有1-5 μg左右,則應(yīng)選用 超薄型離心柱,加20-50 μl洗脫緩沖液;回收前為5-20 μg左右的DNA,應(yīng)選用普通型離 心柱,加30-100 μl洗脫緩沖液;如回收前有20-30 μg左右DNA,則應(yīng)選用大量型離心 柱,加50-300 μl洗脫緩沖液。

3.回收率與初始DNA量和洗脫體積有關(guān),初始量越少、洗脫體積越少,回收率越低。

4.對于10 kb的DNA片段可以適當(dāng)?shù)脑黾游胶拖疵摰臅r間

5.平衡液BL的加入能夠改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和穩(wěn)定性,消除高溫 /潮濕或其他不良環(huán)境因素對吸附柱造成的影響。使用前請先檢查平衡液BL是否出現(xiàn)渾 濁,如有混濁現(xiàn)象,可在37℃水浴中加熱幾分鐘,即可恢復(fù)澄清。

6.用平衡液處理過的柱子應(yīng)當(dāng)天使用,放置時間過長會影響效果。 

注意事項(xiàng) 請務(wù)必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項(xiàng)



天根DNA純化試劑盒-DP205操作步驟

 使用前請?jiān)谄匆篜W中加入無水乙醇,加入體積請參照瓶上的標(biāo)簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機(jī)在室溫下離心。

1. 柱平衡步驟:向吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中)加入500 μl的平衡液BL,12,000 rpm (~13,400×g) 離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。(請使用 當(dāng)天處理過的柱子)

2. 估計(jì)PCR反應(yīng)液或酶切反應(yīng)液的體積,向其中加入5倍體積的結(jié)合液PB,充分混勻(無 需去除石蠟油或礦物油)。 注意:如PCR反應(yīng)體系為100 μl(不包括石蠟油體積), 則加入500 μl結(jié)合液PB。

3. 將上一步所得溶液加入一個吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中),室溫放置2 min, 12,000 rpm(~13,400×g)離心30-60 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CB3放入收集 管中。 注意:吸附柱容積為800 μl,若樣品體積大于800 μl可分批加入。

4. 向吸附柱CB3中加入600 μl漂洗液PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12,000 rpm (~13,400×g)離心30-60 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CB3放入收集管中。 注意:如果純化的DNA是用于鹽敏感的實(shí)驗(yàn),例如平末端連接實(shí)驗(yàn)或直接測序,建議PW 加入后靜置2-5 min再離心。

5. 重復(fù)操作步驟4。

6. 將離心吸附柱CB3放回收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)離心2 min,盡量除去漂洗 液。將吸附柱置于室溫放置數(shù)分鐘,徹底地晾干,以防止殘留的漂洗液影響下一步的實(shí) 驗(yàn)。 注意:漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應(yīng)(酶切、PCR等)實(shí)驗(yàn)

7. 取出吸附柱CB3放入一個干凈的離心管中,向吸附膜中間位置懸空滴加適量洗脫緩沖液 EB,室溫放置2 min。12,000 rpm(~13,400×g)離心2 min,收集DNA溶液。 注意:洗脫液的體積不應(yīng)少于50 μl,體積過少會影響回收的效率。洗脫液的pH值對于洗 脫效率有很大影響。若后續(xù)做測序,需使用ddH2O做洗脫液,并保證其pH值在7.0-8.5范 圍內(nèi),pH值低于7.0會降低洗脫效率;且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。DNA 也可以用緩沖液(10 mM Tris-Cl, pH8.0) 洗脫。為了提高DNA的回收量,可將離心得到的 溶液重新加回離心吸附柱中,再次離心。


 DNA濃度及純度檢測 回收得到的DNA片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測濃度與純度。 DNA應(yīng)在OD260處有顯著吸收峰,OD260值為1相當(dāng)于大約50 μg/ml雙鏈DNA、40 μg/ml 單鏈DNA。 OD260/OD280比值應(yīng)為1.7-1.9,如果洗脫時不使用洗脫緩沖液,而使用ddH2O,比值會偏 低,因?yàn)閜H值和離子存在會影響光吸收值,但并不表示純度低。
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