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  • 骨髓間充質(zhì)干細胞成骨誘導分化培養(yǎng)基

骨髓間充質(zhì)干細胞成骨誘導分化培養(yǎng)基

骨髓間充質(zhì)干細胞在骨髓間充質(zhì)干細胞成骨誘導分化培養(yǎng)基誘導作用下,會逐漸分化成前成脂細胞和脂肪細胞,將形成大小不一的脂滴。油紅O在脂肪中的溶解度大于其在染液中的溶解度,從而使脂肪著色呈現(xiàn)紅色或橘紅色。產(chǎn)品適用于骨髓間充質(zhì)干細胞成脂誘導,能提高誘導效率。
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骨髓間充質(zhì)干細胞成骨誘導分化培養(yǎng)基

英文名稱:Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Osteogenic Differentiation Kit

貨號:BMRS-D101 

規(guī)格:200 mL/Kit

 質(zhì)檢標準 pH:7.2~7.4

 內(nèi)毒素含量:<10 EU/mL 

生物安全:細菌、真菌、支原體檢測陰性 

質(zhì)量檢測:誘導測試合格

產(chǎn)品組分

規(guī)格


HyCyteTM 兔骨髓間充質(zhì)干細胞成脂誘導分化試劑盒 

Rabbit Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Adipogenic Differentiation Kit

 貨號:BMRB-D102 

規(guī)格:400 mL/Kit 

成分2

兔骨髓干細胞

| 使用說明

 1. 成脂誘導分化操作 

1.1 接種干細胞 取對數(shù)生長期的細胞, 按 照 2.0×10e4 cells/cm2 的細胞密度接種至培養(yǎng)器皿,于 37℃, 5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)至匯合度 90~100%,棄掉 上清,加入成脂誘導分化培養(yǎng)基誘導液。 

NOTE:如細胞貼壁性較差,建議使用 0.1%明膠對培養(yǎng)底 面進行包被。

 1.2 細胞分化誘導 于 37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)約 3 天,更 換為成脂誘導分化培養(yǎng)基維持液,培養(yǎng) 1 天后, 再更換為成脂誘導分化培養(yǎng)基誘導液,繼續(xù)培養(yǎng) 3 天。 按照以上換液頻率誘導 14~21 天,并注意觀 察細胞形態(tài)變化。根據(jù)細胞誘導形成的脂滴數(shù)量 和大小,決定終止細胞誘導的時間,并進行染色 鑒定。 

2. 染色鑒定

 2.1 細胞固定 吸去培養(yǎng)基使用適量 1×PBS 清洗一次,棄去 后取適量 4%中性甲醛溶液覆蓋培養(yǎng)器皿底面,室 溫固定 30~60 min,棄去固定液再使用 1×PBS 清 洗兩次。

 2.2 油紅 O 染色 取生理鹽水或1×PBS與油紅O原液配制油紅 O工作液(油紅O原液: 生理鹽水=3:2),現(xiàn)用現(xiàn) 配。配制后可對油紅O工作液進行離心,以沉淀 染色液中的過飽和析出物。向清洗干凈的誘導孔 內(nèi)加入適量油紅O工作液,靜置染色30min。吸走 油紅O工作液,用1×PBS清洗兩次,并加入適量1 ×PBS避免細胞干燥。

 2.3 誘導評估 顯微鏡下觀察成脂染色效果,并進行圖像采 集和誘導評估。誘導成功時,脂滴與油紅 O 染料 結(jié)合后呈現(xiàn)紅色或橘紅色。 NOTE: 干細胞的成脂分化水平因細胞類型、細胞供體來 源,培養(yǎng)條件、細胞代次、細胞狀態(tài)和分化時間等因素而異。

成骨干細胞誘導分化

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