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脂肪間充質(zhì)干細胞成軟骨誘導(dǎo)分化試劑盒
脂肪間充質(zhì)干細胞成軟骨誘導(dǎo)分化試劑盒規(guī)格:
質(zhì)檢標準 pH:7.2~7.4
內(nèi)毒素含量:<10 EU/mL
生物安全:細菌、真菌、支原體檢測陰性
質(zhì)量檢測:誘導(dǎo)測試合格
| 檢驗原理
阿利辛藍廣泛用于酸性多糖的染色,如軟骨 或組織中的糖胺聚糖和細胞分泌的外被多糖的 染色等。干細胞在誘導(dǎo)培養(yǎng)基的作用下,會逐漸 向軟骨細胞方向分化。軟骨細胞外具有一層富含 蛋白多糖的基質(zhì),是成軟骨分化的標志物,可被 阿利辛藍染成藍綠色。
成軟骨誘導(dǎo)分化操作(平面誘導(dǎo))
1. 細胞分化誘導(dǎo)
將對數(shù)生長期的細胞消化下來計數(shù),成軟骨 誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基誘導(dǎo)液重懸細胞,離心后調(diào)整細 胞密度密度1.0~2.0×10e7cells/mL。 吸取20 μL細胞懸液(約2.0~4.0×10e5個細胞) 懸滴至24孔板中央。置于37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境 下培養(yǎng)2~3 h使細胞貼壁。 2~3 h后補充1 mL成軟骨誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基誘 導(dǎo)液正常培養(yǎng)。每隔2~3天換液一次。按照以上 換液頻率誘導(dǎo)21~28天,并注意觀察細胞形態(tài)變 化。
2. 染色鑒定
2.1 細胞固定 吸去培養(yǎng)基使用適量 1×PBS 清洗一次,棄去 后取適量 4%中性甲醛溶液覆蓋培養(yǎng)器皿底面,室 溫固定 30~60 min 后,棄去固定液再使用 1×PBS 清洗兩次。
2.2 阿利辛藍染色 向清洗干凈的誘導(dǎo)孔內(nèi)加入適量染色液,避 光靜置染色 30 min。 吸去阿利辛藍染色液,用 1×PBS 清洗兩次, 并加入適量 1×PBS 避免細胞干燥。
2.3 誘導(dǎo)評估 顯微鏡下觀察成軟骨染色效果,并進行圖像 采集和誘導(dǎo)評估。誘導(dǎo)成功時,軟骨組織中的內(nèi) 酸性粘多糖可被阿利辛藍染成藍綠色。
1. 干細胞的準備
將對數(shù)生長期的細胞消化下來計數(shù),取 3×10e5 個細胞轉(zhuǎn)移到 15 mL 離心管中,250 g 離 心 4 min。 棄上清,加入 0.5 mL 成軟骨誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基 預(yù)混液,重懸細胞,150 g 離心 5 min。小心棄去 上清,加入 0.5 mL 成軟骨誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基誘導(dǎo) 液,重懸細胞,150 g 離心 5 min。 將 15 mL 離心管的管蓋稍稍旋開,放置于 37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)。
2. 細胞分化誘導(dǎo)
24 h 后觀察細胞沉淀形變團聚的情況,如有 明顯的變化,則小心輕柔地撥動管底,嘗試讓細 胞團脫離管底,全部浸潤在誘導(dǎo)液中。 置于 37℃,5% CO2培養(yǎng)環(huán)境下培養(yǎng)約 21 天, 通常每 2 天更換一次新鮮配制的成軟骨誘導(dǎo)分化 培養(yǎng)基誘導(dǎo)液。注意觀察細胞團成球情況及表面 光滑度,決定終止細胞誘導(dǎo)的時間,并進行染色 鑒定。
3. 染色鑒定
3.1 軟骨球固定 將軟骨球從離心管中轉(zhuǎn)移至 EP 管,并使用 1 ×PBS 清洗兩次,最后置于適量的 4%中性甲醛溶 液中。
3.2 石蠟包埋切片 軟骨球經(jīng)石蠟包埋后切片。
3.3 阿利辛藍染色 將石蠟切片脫蠟和脫水,使用阿利辛藍染色 液染色 30 min,用自來水沖洗 2 min,蒸餾水沖 洗 1 次。
3.4 誘導(dǎo)評估 顯微鏡下觀察成軟骨染色效果,并進行圖像 采集和誘導(dǎo)評估。誘導(dǎo)成功時,軟骨組織中的內(nèi) 酸性粘多糖可被阿利辛藍染成藍綠色。
NOTE: 干細胞的成軟骨分化水平因細胞類型、細胞供體 來源,培養(yǎng)條件、細胞代次、細胞狀態(tài)和分化時間等因素而異。
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