信息摘要:
細胞復(fù)蘇培養(yǎng)操作步驟和方法:實驗開始前,將無菌培養(yǎng)瓶,15ml 離心管、移液管、移液槍、槍頭等放入無菌超凈工作臺,以紫外線照射 30min。
細胞復(fù)蘇是將休眠的細胞重新活化,使之重新生長,進入細胞周期,進而分裂產(chǎn)生子細胞的過程。細胞復(fù)蘇后,可進入細胞周期,重新獲得細胞類型特異的生物學(xué)功能。
實驗開始前,將無菌培養(yǎng)瓶,15ml 離心管、移液管、移液槍、槍頭等放入無菌超凈工作臺,以紫外線照射 30min。然后,采用通風(fēng)機通風(fēng) 3min。以 75%酒精擦拭操作臺和雙手。
將離心機調(diào)節(jié)至 800rpm,5min。水浴箱調(diào)節(jié)至 37 度恒溫。取細胞完全培養(yǎng)基,放于水浴箱中預(yù)熱。
消毒雙手和超凈臺。取約 10ml 細胞完全培養(yǎng)基放于 15ml 離心管中。
實驗前備冰盒,快速由液氮中取出凍存的細胞,置于冰盒內(nèi)。然后迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱到 37 度的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化,注意管口處高于水面,以免進入導(dǎo)致污染。整個解凍過程最好在 1 分鐘以內(nèi),以防融化過程中產(chǎn)生大量冰晶損傷細胞,約 1min 后凍存管內(nèi)液體完全溶解,取出用酒精噴拭凍存管的外壁,立即拿入超凈臺內(nèi)。
以無菌槍頭吸取細胞凍存液,置于已放入細胞完全培養(yǎng)基的離心管中,上下吹打 5 次,使凍存液與完全培養(yǎng)基充分混勻,盡量減少凍存液中 DMSO 的濃度,減輕細胞損傷。以封口膜封好管口。
配平離心:采用天平配平兩端,800rpm,室溫離心 5min。
采用細胞計數(shù)儀 快速細胞計數(shù)及活率分析儀進行細胞計數(shù)。加入 10ml CASY-ton 至以標記 viable 的管子中,加入 100ul 細胞懸液,顛倒混勻三次,可進行細胞計數(shù)??梢娒亢辽龖乙褐杏谢罴毎?2 乘 10 的 5 次方.
離心后,吸棄上清液,不要吸到底部的細胞沉淀。根據(jù)計數(shù)結(jié)果,向離心管內(nèi)的細胞沉淀加入 10ml海星細胞完全培養(yǎng)基,反復(fù)吹打制成細胞懸液,吹打過程中盡量不要產(chǎn)生氣泡。符合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi),左右輕輕搖動培養(yǎng)瓶,把細胞搖均勻,將NEST培養(yǎng)瓶放入 37℃,5%CO2 的培養(yǎng)箱中培養(yǎng), 2-4 小時或者 24-48 小時后換液繼續(xù)培養(yǎng),換液的時間由細胞情況而定,一般以大部分細胞狀態(tài)良好時換液為宜,比如超過半數(shù)的細胞貼壁,
取細胞的過程中未帶好防凍手套,護目鏡。此項尤為重要,細胞凍存管可能漏入液氮,解凍時凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸,當(dāng)然,選擇好的凍存管此狀況一般不會發(fā)生。
在常溫下,凍存液中的 DMSO 對細胞的毒副作較大,因此,必須在一到兩分鐘內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)蘇溫度太慢,會造成細胞的損傷。
一般凍存細胞解凍時 1ml 細胞液要加 10ml-15ml 培養(yǎng)液,培養(yǎng)基加入過多,造成細胞濃度過低,不利于細胞的貼壁,所以進行細胞的計數(shù)尤為重要。
細胞在解凍時,水浴鍋內(nèi)凍存管太多,導(dǎo)致傳熱不佳,使融化時間延長。正
規(guī)來說,需要迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化。并且一次復(fù)蘇細胞過多,容易忘記更換吸頭和吸管,導(dǎo)致細胞交叉污染。
干式細胞復(fù)蘇儀采用無水加熱方式,可在 GMP 環(huán)境下使用,能降低傳統(tǒng)復(fù)蘇的污染風(fēng)險或潛在危險,且在細胞活率上達到與傳統(tǒng)水浴鍋相媲美的水準.。
干式細胞復(fù)蘇儀:安全智能的細胞復(fù)蘇解決方案
干式細胞復(fù)蘇儀這個實驗室儀器采用無水加熱方式,可在 GMP 環(huán)境下使用,能降低傳統(tǒng)復(fù)蘇的污染風(fēng)險或潛在危險,且在細胞活率上達到與傳統(tǒng)水浴鍋相媲美的水準,展現(xiàn)出良好的技術(shù)創(chuàng)新力,從根本上規(guī)避了水源對細胞的潛在污染風(fēng)險,確保實驗環(huán)境的純凈與安全。
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